Елена Шульга — сценарист — биография, фото, лучшие фильмы и сериалы
- Сбросить
Сценарист — 3
1 3Попробуйте расслабить фильтры
5.0
Хитровка. Знак четырех7.2
Переводчик Guy Ritchie’s The Covenant7.2
Снегирь8.0
Барби Barbie6.8
Кунг-фу жеребец Long ma jing shen7.2
Джон Уик 4 John Wick: Chapter 46.9
Молодой человек5.9
Комната чудес La chambre des merveilles6.5
Мизантроп To Catch a Killer7.2
Кухня со звездами À la belle étoile5.8
Маша и Медведь: Скажите «Ой!»8.7
Оппенгеймер Oppenheimer6.3
Флэш The Flash5.4
Бекки в ярости The Wrath of Becky5.9
Микулай8.0
Стражи Галактики.
Часть 3 Guardians of the Galaxy Vol. 36.1
Жанна Дюбарри Jeanne du Barry5.3
Беспринципные в деревне6.4
Операция «Фортуна» Operation Fortune: Ruse de guerre6.1
Вкус счастья Umami5.7
Стоп-слово Sanctuary6.3
Принц пустыни Zodi & Tehu, frères du désert6.7
Три мушкетёра: Д’Артаньян Les trois mousquetaires: D’Artagnan5.5
Трансформеры: Восхождение Звероботов Transformers: Rise of the Beasts6.3
Яга и книга заклинаний Библиотекарь Пищеблок Райцентр Формула преступления Король и Шут Цыганка У неділю рано зілля копала Счастье не за горами Зимородок Yali Çapkini Табу Taboo И просто так And Just Like That… Острые козырьки Peaky Blinders Плохой и сумасшедший Bad and Crazy Тайна пропавшей деревни Закрыть гештальт Открытый брак Атака титанов Shingeki no Kyojin Миссия: Аметист Юность Чудотворцы Miracle Workers Масяня Мёрзлая земля Очень странные дела Stranger ThingsСалон красоты Елена Шульга
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| короткие волосы | 800 | 2 000 | 3 500 |
| средние волосы | 1 000 | 2 500 | 4 000 |
| длинные волосы | 1 200 | 3 000 | 5 000 |
| сверхдинные волосы | 1 560 | 3 900 | 6 500 |
| стрижка челки | 200 | 400 | 800 |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| стрижка | 800 | 1 500 | 2 500 |
| окантовка | 300 | 500 | 800 |
| стрижка усов, бороды | 200 | 500 | 800 |
| стрижка машинкой | 500 | 800 | 1 300 |
| тонирование волос | 1 000 | 1 000 | 1 000 |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| стрижка от 2-11 лет | 500 | 1 000 | 1 300 |
| окантовка | 100 | 200 | 400 |
| орнамент | 300 | 500 | 700 |
| стрижка челки | 100 | 200 | 300 |
| услуга | стоимость | ||
| детский маникюр | 500 | ||
| детское покрытие ногтей лаком | 200 |
| услуга | стоимость | ||
| форма бровей | 500 | ||
| коррекция бровей | 500 | ||
| окрашивание бровей | 500 | ||
| окрашивание бровей хной | 600 | ||
| окрашивание ресниц | 500 | ||
| биотатуаж (хной) бровей | 1 500 | ||
| комплекс (коррекция и окрашивание бровей, ресниц ) | 1 300 | ||
| механическая чистка | 3 000 | ||
| ультразвуковая чистка | 2 500 | ||
| ультразвуковая чистка (надплечье) | 1 500 | ||
| ультразвуковая чистка (полностью) | 2 500 | ||
| экспресс уход | 1 500 | ||
| маска по типу кожи | 500 | ||
| альгинатная маска | 550 | ||
дарсонвализация лица — поможем построить дом с проектом. | 300 | ||
| демакияж | 200 | ||
| прокол ушей (+ медицинская серьга) | 1 500 |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| короткие волосы | 600 | 1 300 | 1 500 |
| средние волосы | 800 | 1 600 | 2 000 |
| длинные волосы | 1 100 | 1 800 | 2 500 |
| сверхдинные волосы | 1 500 | 2 340 | 3 250 |
| услуга | стоимость | ||
| маникюр классический (без покрытия) | 1 000 | ||
| маникюр европейский | 1 000 | ||
| маникюр аппаратный | 1 100 | ||
| маникюр медицинский Footlogix | 1 500 | ||
| маникюр бразильский | 1 300 | ||
| маникюр горячий | 1 500 | ||
| покрытие ногтей лаком | 400 | ||
| покрытие ногтей лаком French | 500 | ||
| покрытие ногтей лаком Venylux | 400 | ||
| покрытие ногтей Лечебное | 400 | ||
| покрытие ногтей лечебное IBX | 500 | ||
| покрытие ногтей Shellac | 950 | ||
| покрытие ногтей Shellac French | 1 150 | ||
| покрытие ногтей Shellac Кошачий глаз | 1 300 | ||
| дизайн ногтей | от 150 | ||
| снятие лака | 100 | ||
| снятие Shellac | 400 | ||
| снятие Shellac (1 ноготь) | 40 |
| услуга | стоимость | ||
| лимфодреннажный массаж лица, шеи и зоны декольте | 1 500 | ||
| массаж кисточками | 1 000 | ||
| био-массаж | 2 000 |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| короткие волосы | 900 | 1 500 | 2 000 |
| средние волосы | 1 200 | 1 800 | 2 400 |
| длинные волосы | 1 600 | 2 300 | 2 900 |
| сверхдинные волосы | 2 000 | 2 990 | 3 770 |
| плетение косы (без мытья головы) | от 400 | от 600 | от 1 000 |
| услуга | стоимость | ||
| маникюр классический (без покрытия) | 1 100 | ||
| маникюр европейский | 1 200 | ||
| маникюр аппаратный | 1 300 | ||
| маникюр медицинский Footlogix | 1 800 | ||
| покрытие лаком | 400 |
| услуга | стоимость | ||
| брови (волоски/ микроблейдинг) | 7 000 | ||
| брови (шатирование-растушевка) | 6 000 | ||
| глаза | 7 000 | ||
| губы (контур) | 7 000 | ||
| губы (контур с растушевкой) | 8 000 | ||
| анестизия | 500 | ||
| коррекция (до 2-х месяцев) | 50% от стоимости |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| короткие волосы | 1 200 | 2 000 | 3 000 |
| средние волосы | 1 800 | 2 500 | 4 000 |
| длинные волосы | 3 000 | 5 000 | |
| сверхдлинные волосы | 3 000 | 3 900 | 6 500 |
| услуга | стоимость | ||
| наращивание ногтей гелем | 3 000 | ||
| наращивание ногтей гелем French | 3 500 | ||
| наращивание ногтей гелем (1 ноготь) | 300 | ||
| наращивание ногтей гелем French | 350 | ||
| снятие (1 ноготь) | 700 – 1 000 | ||
| снятие (1 ноготь) | 70 – 100 | ||
| коррекция | 1 500 | ||
| коррекция French | 1 750 |
| услуга | стоимость | ||
| воротниковая зона | 600 | ||
| массаж спины (40минут) | 1 000 | ||
| массаж мужской спины (40 минут) | 1 300 | ||
антицеллюлитный массаж бедер и ягодиц (1ч. ) | 1 500 | ||
| антицеллюлитный массаж бедер и ягодиц (1,5ч.) | 2 000 | ||
| антицеллюлитный массаж (30 мин.) | 1 000 | ||
| антицеллюлитный массаж (1ч.) | 1 500 | ||
| антицеллюлитный массаж комплекс (1,5ч.) | 2 000 | ||
| антицеллюлитный массаж комплекс (2ч.) | 2 800 | ||
| лимфодреннажный массаж (1 ч.) | 1 600 | ||
| лимфодреннажный массаж ног (40 минут) | 1 000 | ||
| общий массаж (1,5 ч.) | 2 000 | ||
| общий массаж мужской (1,5 ч.) | 2 700 | ||
| фито бочка | 1 000 | ||
| фито бочка+(обертывание 1 зона) | 2 500 | ||
| фито бочка+(обертывание 2 зоны) | 3 000 |
| модельер | стилист | топ-стилист | |
| короткие волосы | 1 500 | 3 200 | 4 900 |
| средние волосы | 2 000 | 3 900 | 5 700 |
| длинные волосы | 2 800 | 4 800 | 6 700 |
| сверхдлинные волосы | 3 100 | 6 240 | 8 710 |
| услуга | стоимость | ||
| массаж рук | 300 | ||
| пилинг рук | 300 | ||
| парафинотерапия | 400 | ||
| коррекция формы ногтей | 300 | ||
| полировка ногтей | 200 | ||
| шлифовка | 200 | ||
| укрепление ногтей гелем | 750 |
| услуга | стоимость | ||
| ноги полностью | 1 800 | ||
| голень | 900 | ||
| бедра | 900 | ||
| зона подмышек | 600 | ||
| руки полностью | 900 | ||
| руки до локтя | 600 | ||
| бикини классический | 1 800 | ||
| бикини голубое | 2 200 | ||
| эпиляция одна (1 зона) | 500 | ||
| эпиляция спины | |||
| эпиляция живота | |||
| анестезия | |||
| электроэпиляция | 1 минута 25 |
| (от 2-х тонов) | модельер | стилист | топ-стилист |
| короткие волосы | 2 500 | 4 500 | 6 700 |
| средние волосы | 3 000 | 5 200 | 7 700 |
| длинные волосы | 3 500 | 6 000 | 8 700 |
| сверхдлинные волосы | 4 000 | 7 800 | 11 300 |
Взрослый сын (1979) — IMDb
ВАША ОЦЕНКА
Фото28
Лучшие актеры
Ольга Гудкова Евгений Леонов-Гладышев- Андрей Шульгин
- Сергей Шульгин — отец Андрей
- Мария Шульгина — матый Андрей
- бабушка Андрея Шульгина
- Кира
- (как Т.
Божок)
Божок)- Женя
- (как Е. Глебова)
- Надежда Борисовна
- (как Н. Бондарчук) 90 007 Людмила Шагалова
- Катерина Коврова
- (как Л. Шагалова)
- хозяйка дома в Крыму
- (как Тер-Осипян Н.)
- Лена
- (как Терентьева Н.) 9000 7 Валентин Брылеев
- Николай Ковров
- (как В. Брылеев)
- Агния 900 04
- (как Е. Цыплакова)
- сын Лены
- сын Лены
- Режиссёр детский театр
- (как В. Александров)
- Директор
- 90 003 Александр Панкратов-Черный
- Сценарист
- Ганна Оганисян-Слуцкий
- Все актеры и съемочная группа
- Производство, кассовые сборы и многое другое на IMDbPro 9000 7
- Дата выпуска
- Декабрь 1979 г. (Советский Союз)
9 0173 Страна происхождения - Декабрь 1979 г.
- Советский Союз
- Язык
- Русский
- Также известен как
- Взрослый сын
90 191 Производственная компания - Мосфильм
- См. другие кредиты компании на IMDbPro
- Время работы
1 час 26 минут
- Цвет
- Звуковой микс
Брылеев)А. Смыков
Елена ЦыплаковаСюжетная линия
Знаете ли вы
Отзывы пользователей
Оставьте первый отзывЛучшие предложения
Войдите, чтобы оценить и посмотреть список для персональных рекомендаций
ВойдитеПодробности
(Советский Союз)Технические характеристики
Новости по теме
Добавить эта страница
Предложить редактирование или добавить отсутствующий контент
Top Gap
Каков план сюжета на английском языке для Взрослый сын (1979)?
ОтветитьЕще для изучения
Недавно просмотренные
У вас нет недавно просмотренных страниц
Химическая оптимизация миРНК для безопасного и эффективного подавления sFLT1 плаценты
1.
Сонес Дж.Л., Дэвиссон Р.Л. Преэклампсия у мышей и женщин. Физиол. Геномика. 2016; 48: 565–572. doi: 10.1152/physiolgenomics.00125.2015. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Бакес Ч. Х., Маркхэм К., Мурхед П., Кордеро Л., Нанкервис К. А., Джанноне П. Дж. Материнская преэклампсия и неонатальные исходы. Дж. Беременность. 2011;2011:214365. дои: 10.1155/2011/214365. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Ван Ю., Хао М., Сэмпсон С., Ся Дж. Плановые роды в сравнении с выжидательной тактикой при преэклампсии: метаанализ РКИ. Арка Гинекол. Обст. 2017; 295:607–622. doi: 10.1007/s00404-016-4281-9. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Преэклампсия. Ланцет. 2016; 387:999–1011. doi: 10.1016/S0140-6736(15)00070-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Палмер К.Р., Тонг С., Кайтуу-Лино Т.Дж. Плацентарно-специфический sFLT-1: роль в патофизиологии преэклампсии и его трансляционные возможности для клинического прогнозирования и диагностики.
Мол. Гум. Воспр. 2017;23:69–78. doi: 10.1093/molhr/gaw077. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Maynard S.E., Min J.Y., Merchan J., Lim K.H., Li J., Mondal S., Libermann T.A., Morgan J.P., Sellke F.W., Stillman I.E., et al. Избыток плацентарной растворимой fms-подобной тирозинкиназы 1 (sFlt1) может способствовать дисфункции эндотелия, гипертонии и протеинурии при преэклампсии. Дж. Клин. Вкладывать деньги. 2003; 111: 649–658. doi: 10.1172/JCI17189. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Palmer K.R., Kaitu’u-Lino T.J., Hastie R., Hannan NJ, Ye L., Binder N., Cannon P., Tuohey L., Johns TG, Shub A., Tong S. Плацентарно-специфический белок sFLT-1 e15a повышается при преэклампсии, противодействует передаче сигналов фактора роста эндотелия сосудов и обладает антиангиогенной активностью. Гипертония. 2015;66:1251–1259. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.115.05883. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Fan X., Rai A., Kambham N., Sung J.F., Singh N.
, Petitt M., Dhal S., Agrawal R., Sutton R.E., Druzin M.L., et al. Эндометриальный VEGF индуцирует плацентарный sFLT1 и приводит к осложнениям беременности. Дж. Клин. Вкладывать деньги. 2014; 124:4941–4952. doi: 10.1172/JCI76864. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Vogtmann R., Heupel J., Herse F., Matin M., Hagmann H., Bendix I., Kraker K., Dechend R., Winterhager E., Kimmig R., et al. Циркулирующий материнский sFLT1 (растворимая fms-подобная тирозинкиназа-1) достаточен для нарушения ремоделирования спиральных артерий в модели мышей с преэклампсией. Гипертония. 2021; 78: 1067–1079. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.121.17567. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Chaiworapongsa T., Romero R., Espinoza J., Bujold E., Mee Kim Y., Goncalves L.F., Gomez R., Edwin S. Доказательства, подтверждающие роль блокады системы фактора роста эндотелия сосудов в патофизиологии преэклампсии сиа. Премия «Молодой следователь». Являюсь. Дж. Обст.
Гинекол. 2004; 190:1541–1547. doi: 10.1016/j.ajog.2004.03.043. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Rana S., Powe C.E., Salahuddin S., Verlohren S., Perschel F.H., Levine R.J., Lim K.H., Wenger J.B., Thadhani R., Karumanchi S.A. Ангиогенные факторы и риск неблагоприятных исходов у женщин с подозрением на преэкламму сиа. Тираж. 2012;125:911–919. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.111.054361. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Олссон А.К., Димберг А., Крюгер Дж., Клаессон-Уэлш Л. Передача сигналов рецептора VEGF – в контроле сосудистой функции. Нац. Преподобный Мол. Клеточная биол. 2006; 7: 359–371. doi: 10.1038/nrm1911. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Рана С., Берк С.Д., Каруманчи С.А. Дисбаланс циркулирующих ангиогенных факторов в патофизиологии преэклампсии и родственных расстройств. Являюсь. Дж. Обст. Гинекол. 2020 г.: 10.1016/j.ajog.2020.10.022. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
14. Thadhani R.
, Hagmann H., Schaarschmidt W., Roth B., Cingoez T., Karumanchi S.A., Wenger J., Lucchesi K.J., Tamez H., Lindner T., et al. Удаление растворимой fms-подобной тирозинкиназы-1 путем афереза с декстрансульфатом при преэклампсии. Варенье. соц. Нефрол. 2016; 27:903–913. doi: 10.1681/ASN.2015020157. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Thadhani R., Kisner T., Hagmann H., Bossung V., Noack S., Schaarschmidt W., Jank A., Kribs A., Cornely O.A., Kreyssig C., et al. Пилотное исследование экстракорпорального удаления растворимой fms-подобной тирозинкиназы 1 при преэклампсии. Тираж. 2011;124:940–950. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.111.034793. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Li Z., Zhang Y., Ying Ma J., Kapoun A.M., Shao Q., Kerr I., Lam A., O’Young G., Sannajust F., Stathis P., et al. Рекомбинантный фактор роста эндотелия сосудов 121 ослабляет гипертензию и улучшает повреждение почек в крысиной модели преэклампсии. Гипертония. 2007; 50: 686–692.
doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.107.092098. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Makris A., Yeung K.R., Lim S.M., Sunderland N., Heffernan S., Thompson J.F., Iliopoulos J., Killingsworth M.C., Yong J., Xu B., et al. Плацентарный фактор роста снижает артериальное давление в модели маточно-плацентарной ишемии преэклампсии у нечеловекообразных приматов. Гипертония. 2016;67:1263–1272. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.116.07286. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Бергманн А., Ахмад С., Кадмор М., Грубер А.Д., Витшен П., Линденмайер В., Кристофори Г., Гросс В., Гонсалвес А., Гроне Х.Дж. и соавт. Снижение циркулирующего растворимого Flt-1 облегчает симптомы, подобные преэклампсии, у мышиной модели. J. Cell Мол. Мед. 2010; 14:1857–1867. doi: 10.1111/j.1582-4934.2009.00820.x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Fire A., Xu S., Montgomery M.K., Kostas S.A., Driver S.E., Mello C.C. Мощная и специфическая генетическая интерференция двухцепочечной РНК у Caenorhabditis elegans.
Природа. 1998;391:806–811. [PubMed] [Google Scholar]
20. Ашар-Пател А., Каймаз Ю., Раджакумар А., Бейли Дж. А., Каруманчи С. А., Мур М. Дж. Анализ FLT1 и сайта полиаденилирования (PAS) по всему транскриптому при преэклампсии. науч. 2017;7:12139. doi: 10.1038/s41598-017-11639-6. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Туранов А.А., Ло А., Хасслер М.Р., Макрис А., Ашар-Патель А., Альтерман Дж.Ф., Коулз А.Х., Харасти Р.А., Ру Л., Годиньо Б. и др. Модуляция РНКи плацентарного sFLT1 для лечения преэклампсии. Нац. Биотехнолог. 2018 г.: 10.1038/nbt.4297. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Allerson C.R., Sioufi N., Jarres R., Prakash T.P., Naik N., Berdeja A., Wanders L., Griffey R.H., Swayze E.E., Bhat B. Полностью 2’-модифицированный олигонуклеотидный дуплекс с улучшенной активностью и стабильностью in vitro по сравнению с немодифицированной малой интерферирующей РНК. Дж. Мед. хим. 2005; 48: 901–904. doi: 10.1021/jm049167j.
[PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Ly S., Navaroli D.M., Didiot M.C., Cardia J., Pandarinathan L., Alterman J.F., Fogarty K., Standley C., Lifshitz L.M., Bellve K.D., et al. Визуализация самодоставляющейся гидрофобно модифицированной siRNA клеточной интернализации. Нуклеиновые Кислоты Res. 2017;45:15–25. дои: 10.1093/нар/gkw1005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Osborn M.F., Coles A.H., Biscans A., Haraszti R.A., Roux L., Davis S., Ly S., Echeverria D., Hassler M.R., Godinho B., et al. Гидрофобность управляет системным распределением конъюгированных с липидами siRNAs через пути транспорта липидов. Нуклеиновые Кислоты Res. 2019;47:1070–1081. doi: 10.1093/nar/gky1232. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Soutschek J., Akinc A., Bramlage B., Charisse K., Constien R., Donoghue M., Elbashir S., Geick A., Hadwiger P., Harborth J., et al. Терапевтическое молчание эндогенного гена путем системного введения модифицированных миРНК.
Природа. 2004; 432: 173–178. doi: 10.1038/nature03121. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
26. Бирн М., Цеков Р., Ван Ю., Роджерс А., Кардия Дж., Форд Г., Холтон К., Пандаринатан Л., Лапьер Дж., Стэнни В. и соавт. Новые гидрофобно модифицированные соединения асимметричной РНК-интерференции (sd-rxRNA) демонстрируют высокую эффективность в глазах. Дж. Окул. Фармакол. тер. 2013; 29: 855–864. doi: 10.1089/jop.2013.0148. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Хан Т., Вебер Х., ДиМуцио Дж., Маттер А., Догдас Б., Шах Т., Танкаппан А., Диса Дж., Джадхав В., Любберс Л. и др. Заглушение миостатина с помощью siRNAs, конъюгированных с холестерином, индуцирует рост мышц. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2016;5:e342. doi: 10.1038/mtna.2016.55. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Alterman J.F., Hall L.M., Coles A.H., Hassler M.R., Didiot M.C., Chase K., Abraham J., Sottosanti E., Johnson E., Sapp E., et al. Гидрофобно модифицированные siRNAs подавляют мРНК Huntingtin в первичных нейронах и мозге мыши.
Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2015;4:e266. doi: 10.1038/mtna.2015.38. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
распределение и безопасность siRNA при местном введении в мозг мыши. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2016;5:e344. doi: 10.1038/mtna.2016.50. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Biscans A., Coles A., Haraszti R., Echeverria D., Hassler M., Osborn M., Khvorova A. Разнообразные липидные конъюгаты для доставки функциональной внепеченочной siRNA in vivo. Нуклеиновые Кислоты Res. 2019;47:1082–1096. doi: 10.1093/nar/gky1239. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Hassler M.R., Turanov A.A., Alterman J.F., Haraszti R.A., Coles A.H., Osborn M.F., Echeverria D., Nikan M., Salomon W.E., Roux L., et al. Сравнение частично и полностью химически модифицированных миРНК при опосредованной конъюгатами доставке in vivo. Нуклеиновые Кислоты Res. 2018;46:2185–2196. doi: 10.1093/nar/gky037. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32.
Biscans A., Caiazzi J., Davis S., McHugh N., Sousa J., Khvorova A. Химическая структура и содержание фосфоротиоата гидрофобно модифицированных siRNAs влияют на внепеченочное распределение и эффективность. Нуклеиновые Кислоты Res. 2020;48:7665–7680. doi: 10.1093/nar/gkaa595. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Foster D.J., Brown C.R., Shaikh S., Trapp C., Schlegel M.K., Qian K., Sehgal A., Rajeev K.G., Jadhav V., Manoharan M., et al. Усовершенствованные конструкции миРНК дополнительно улучшают эффективность конъюгатов GalNAc-siРНК in vivo. Мол. тер. 2018; 26: 708–717. doi: 10.1016/j.ymthe.2017.12.021. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Наир Дж.К., Аттарвала Х., Сегал А., Ван К., Алури К., Чжан С., Гао М., Лю Дж., Индраканти Р., Шофилд С. и др. Влияние повышенной метаболической стабильности на фармакокинетику и фармакодинамику конъюгатов GalNAc-siRNA. Нуклеиновые Кислоты Res. 2017;45:10969–10977. doi: 10.1093/nar/gkx818.
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Balwani M., Sardh E., Ventura P., Peiro P.A., Rees D.C., Stolzel U., Bissell D.M., Bonkovsky H.L., Windyga J., Anderson K.E., et al. Фаза 3 испытания терапевтического РНКи гивосирана для лечения острой перемежающейся порфирии. Н. англ. Дж. Мед. 2020;382:2289–2301. doi: 10.1056/NEJMoa1913147. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Prakash T.P., Lima W.F., Murray H.M., Li W., Kinberger G.A., Chappell AE, Gaus H., Seth PP, Bhat B., Crooke S.T., Swayze E.E. Идентификация метаболически стабильных аналогов 5-фосфата которые поддерживают активность одноцепочечной siRNA. Нуклеиновые Кислоты Res. 2017;45:6994. doi: 10.1093/nar/gkx381. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Parmar R., Willoughby J.L., Liu J., Foster D.J., Brigham B., Theile C.S., Charisse K., Akinc A., Guidry E., Pei Y., et al. 5′-(E)-винилфосфонат: стабильный миметик фосфата может улучшать активность РНК-интерференции конъюгатов siRNA-GalNAc.
Химбиохим. 2016;17:985–989. doi: 10.1002/cbic.201600130. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Haraszti R.A., Roux L., Coles A.H., Turanov A.A., Alterman J.F., Echeverria D., Godinho B., Aronin N., Khvorova A. 5-винилфосфонат улучшает накопление в тканях и эффективность конъюгированных siРНК in vivo. Нуклеиновые Кислоты Res. 2017; 45:7581–7592. doi: 10.1093/nar/gkx507. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Alterman J.F., Godinho B., Hassler M.R., Ferguson C.M., Echeverria D., Sapp E., Haraszti R.A., Coles A.H., Conroy F., Miller R., et al. Химический каркас двухвалентной миРНК для мощной и устойчивой модуляции экспрессии генов во всей центральной нервной системе. Нац. Биотехнолог. 2019;37:884–894. doi: 10.1038/s41587-019-0205-0. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Roehl ISM, Seiffert S. 2011. Метод обнаружения олигонуклеотидов изобретателя с использованием зонда пептидной нуклеиновой кислоты. [Google Scholar]
41.
Chang C.I., Yoo J.W., Hong S.W., Lee S.E., Kang H.S., Sun X., Rogoff H.A., Ban C., Kim S., Li C.J., Lee D.K. Асимметричные более короткие дуплексные структуры siRNA запускают эффективное замалчивание генов с уменьшенными неспецифическими эффектами. Мол. тер. 2009; 17: 725–732. doi: 10.1038/mt.2008.298. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Matranga C., Tomari Y., Shin C., Bartel D.P., Zamore P.D. Расщепление пассажирской нити облегчает сборку siRNA в Ago2-содержащие ферментные комплексы RNAi. Клетка. 2005; 123: 607–620. doi: 10.1016/j.cell.2005.08.044. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Manoharan M., Akinc A., Pandey R.K., Qin J., Hadwiger P., John M., Mills K., Charisse K., Maier M.A., Nechev L., et al. Уникальные свойства подавления генов и структурные свойства 2′-фтор-модифицированных миРНК. Энгью Чем. Междунар. Эд. англ. 2011;50:2284–2288. doi: 10.1002/anie.201006519. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44.
Wu H., Ma H., Ye C., Ramirez D., Chen S., Montoya J., Shankar P., Wang X.A., Manjunath N. Улучшенная функциональность siRNA/shRNA за счет несоответствия дуплекса. ПЛОС Один. 2011;6:e28580. doi: 10.1371/journal.pone.0028580. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Характеристика полностью 2′-модифицированной гетеро- и гомодуплексной гибридизации олигорибонуклеотидов и чувствительности к нуклеазам. Нуклеиновые Кислоты Res. 1995;23:2019–2024. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
46. Homsy D., Monopoli K.R., Betancur-Boissel M., Shmushkovich T., Wolfson A.D., Leyfer D., Khvorova A. Функциональные особенности, определяющие эффективность конъюгированных с холестерином, самодоставляемых, химически модифицированных siRNAs. Нуклеиновые Кислоты Res. 2018;46:10905–10916. doi: 10.1093/nar/gky745. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Chiu Y.L. Функция миРНК в РНКи: анализ химической модификации. РНК. 2003;9: 1034–1048.
doi: 10.1261/РНК.5103703. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Davis S.M., Sousa J., Vangjeli L., Hassler M.R., Echeverria D., Knox E., Turanov A.A., Alterman J.F., Khvorova A. 2′-O-метил на 3′-концах 20-мерной направляющей цепи может негативно повлиять на активность полностью химически модифицированной siRNA, направленную на сайленсинг мишени. Мол. тер. Нуклеиновые кислоты. 2020; 21: 266–277. doi: 10.1016/j.omtn.2020.05.010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Поздеев Н., Ю М., Маки Р., Швеппе Р.Э., Тан А.С., Хауген Б.Р. Интеграция разнородных данных о чувствительности к лекарствам из фармакогеномных исследований рака. Онкотаргет. 2016;7:51619–51625. doi: 10.18632/oncotarget.10010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Характеристика полностью 2′-модифицированной гетеро- и гомодуплексной гибридизации олигорибонуклеотидов и чувствительности к нуклеазам. Нуклеиновые Кислоты Res. 1995;23:2019–2024.
doi: 10.1093/нар/23.11.2019. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Такахаши М., Минакава Н., Мацуда А. Синтез и характеристика 2′-модифицированной-4′-тиоРНК: всестороннее сравнение стабильности нуклеаз. Нуклеиновые Кислоты Res. 2009; 37: 1353–1362. doi: 10.1093/nar/gkn1088. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Ma J.B., Yuan Y.R., Meister G., Pei Y., Tuschl T., Patel D.J. Структурные основы 5′-концевого узнавания направляющей РНК белком A. fulgidus Piwi. Природа. 2005; 434: 666–670. doi: 10.1038/nature03514. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Франк Ф., Соненберг Н., Нагар Б. Структурная основа специфичного к 5′-нуклеотидным основаниям распознавания направляющей РНК AGO2 человека. Природа. 2010; 465:818–822. doi: 10.1038/nature09039. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Boland A., Tritschler F., Heimstadt S., Izaurralde E., Weichenrieder O. Кристаллическая структура и связывание лиганда домена MID эукариотического белка Argonaute.
EMBO Rep. 2010; 11: 522–527. doi: 10.1038/embor.2010.81. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Lima W.F., Prakash T.P., Murray H.M., Kinberger G.A., Li W., Chappell A.E., Li C.S., Murray S.F., Gaus H., Seth P.P., et al. Одноцепочечные siРНК активируют РНКи у животных. Клетка. 2012; 150:883–894. doi: 10.1016/j.cell.2012.08.014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Prakash T.P., Lima W.F., Murray H.M., Elbashir S., Cantley W., Foster D., Jayaraman M., Chappell A.E., Manoharan M., Swayze E.E., Crooke S.T. Липидные наночастицы улучшают активность одноцепочечных миРНК и гапмерных антисмысловых олигонуклеотидов у животных. АКС хим. биол. 2013; 8: 1402–1406. doi: 10.1021/cb4001316. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
57. Elkayam E., Parmar R., Brown C.R., Willoughby J.L., Theile C.S., Manoharan M., Joshua-Tor L. siRNA, несущая (E)-винилфосфонатную группу на 5-м конце направляющей цепи, усиливает сайленсинг гена за счет усиленного связывания с Argonaute-2 человека.
Нуклеиновые Кислоты Res. 2017;45:3528–3536. doi: 10.1093/nar/gkw1171. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Sioud M. Врожденное восприятие собственных и чужих РНК с помощью Toll-подобных рецепторов. Тенденции Мол. Мед. 2006; 12: 167–176. doi: 10.1016/j.molmed.2006.02.004. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
59. Meng Z., Lu M. РНК-интерференция, индуцированная врожденным иммунитетом, нецелевой эффект или иммунный адъювант? Передний. Иммунол. 2017;8:331. doi: 10.3389/fimmu.2017.00331. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Судья А.Д., Бола Г., Ли А.К., Маклахлан И. Дизайн невоспалительной синтетической миРНК, опосредующей сильное замалчивание генов in vivo. Мол. тер. 2006; 13: 494–505. doi: 10.1016/j.ymthe.2005.11.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
61. Fucini R.V., Haringsma H.J., Deng P., Flanagan W.M., Willingham A.T. Модификация аденозина может быть предпочтительной для снижения иммунной стимуляции миРНК.
Нуклеиновая кислота. тер. 2012;22:205–210. дои: 10.1089/нат.2011.0334. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Судья А.Д., Суд В., Шоу Дж.Р., Фанг Д., МакКлинток К., Маклахлан И. Зависимая от последовательности стимуляция врожденного иммунного ответа млекопитающих с помощью синтетической миРНК. Нац. Биотехнолог. 2005; 23: 457–462. doi: 10.1038/nbt1081. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Robbins M., Judge A., Liang L., McClintock K., Yaworski E., MacLachlan I. 2′-O-метил-модифицированные РНК действуют как антагонисты TLR7. Мол. тер. 2007; 15:1663–1669.. doi: 10.1038/sj.mt.6300240. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64. Sioud M., Furset G., Cekaite L. Подавление иммуностимулирующей siRNA-управляемой активации врожденного иммунитета с помощью 2′-модифицированных РНК. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 2007; 361: 122–126. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.06.177. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Eberle F., Giessler K., Deck C., Heeg K.
, Peter M., Richert C., Dalpke AH. Модификации малых интерферирующих РНК, которые отделяют иммуностимуляцию от РНК-интерференции. Дж. Иммунол. 2008;180:3229–3237. doi: 10.4049/jиммунол.180.5.3229. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Freeman D.J., McManus F., Brown E.A., Cherry L., Norrie J., Ramsay J.E., Clark P., Walker I.D., Sattar N., Greer I.A. Краткосрочные и долгосрочные изменения маркеров воспаления в плазме, связанные с преэклампсией. Гипертония. 2004; 44: 708–714. doi: 10.1161/01.HYP.0000143849.67254.ca. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67. Ламарка Б., Корнелиус Д., Уоллес К. Выяснение иммунных механизмов, вызывающих гипертонию во время беременности. Физиология. 2013;28:225–233. doi: 10.1152/physiol.00006.2013. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Розалес К., Лоуэлл К.А., Шноор М., Урибе-Кверол Э. Нейтрофилы: их роль во врожденном и адаптивном иммунитете 2017. J. Immunol. Рез. 2017;2017:9748345. doi: 10.1155/2017/9748345.
[Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. FDA одобрило Givosiran для лечения острой печеночной порфирии. 2019. [Google Scholar]
70. Спрингер А.Д., Дауди С.Ф. Конъюгаты GalNAc-siRNA: лидеры в доставке терапевтических средств РНК-интерференции. Нуклеиновая кислота Ther. 2018;28:109–118. дои: 10.1089/нат.2018.0736. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Prakash T.P., Graham M.J., Yu J., Carty R., Low A., Chappell A., Schmidt K., Zhao C., Ahajan M., Murray H.F., et al. Целенаправленная доставка антисмысловых олигонуклеотидов в гепатоциты с использованием трехантенного N-ацетилгалактозамина повышает активность в 10 раз у мышей. Нуклеиновые Кислоты Res. 2014;42:8796–8807. doi: 10.1093/nar/gku531. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Мацуда С., Кейзер К., Наир Дж. К., Чарисс К., Манохаран Р. М., Кречмер П., Пэн К. Г., В. Ки А., Кандасами П., Уиллоуби Дж. Л. и др. Конъюгаты siRNA, несущие последовательно собранный трехвалентный N-ацетилгалактозамин, связанный через нуклеозиды, вызывают сильное замалчивание генов in vivo в гепатоцитах.
АКС хим. биол. 2015;10:1181–1187. doi: 10.1021/cb501028c. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
73. Раджив К.Г., Наир Дж.К., Джаяраман М., Чарисс К., Танеджа Н., О’Ши Дж., Уиллоуби Дж.Л.С., Юциус К., Нгуен Т., Шульга-Морская С. и др. Специфичная для гепатоцитов доставка siРНК, конъюгированных с новым ненуклеозидным трехвалентным N-ацетилгалактозамином, вызывает надежное замалчивание генов in vivo. Химбиохим. 2015; 16: 903–908. doi: 10.1002/cbic.201500023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
74. Cuellar T.L., Barnes D., Nelson C., Tanguay J., Yu S.F., Wen X., Scales S.J., Gesch J., Davis D., van Brabant Smith A., et al. Систематическая оценка опосредованной антителами доставки миРНК с использованием промышленной платформы конъюгатов ТИОМАБ-миРНК. Нуклеиновые Кислоты Res. 2015;43:1189–1203. doi: 10.1093/nar/gku1362. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
75. Dugal-Tessier J., Thirumalairajan S., Jain N. Конъюгаты антитело-олигонуклеотид: поворот к конъюгатам антитело-лекарство.
Дж. Клин. Мед. 2021; 10 doi: 10.3390/jcm10040838. [Статья PMC free] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76. Клабенкова К., Фокина А., Стеценко Д. Химия пептид-олигонуклеотидных конъюгатов: обзор. Молекулы. 2021; 26 doi: 10.3390/молекулы26175420. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
77. Муратовская А., Экклс М.Р. Конъюгат для эффективной доставки короткой интерферирующей РНК (миРНК) в клетки млекопитающих. ФЭБС лат. 2004; 558: 63–68. doi: 10.1016/s0014-5793(03)01505-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78. Chen C.P., Liu S.H., Lee M.Y., Chen Y.Y. Гепарансульфатные протеогликаны в базальных мембранах плаценты и децидуальной оболочки человека. Плацента. 2008; 29: 309–316. doi: 10.1016/j.placenta.2008.01.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Zhang M.M., Bahal R., Rasmussen T.P., Manautou J.E., Zhong X.B. Рост терапевтических средств на основе миРНК: обновленные клинические исследования. Биохим. Фармакол. 2021;189:114432.
doi: 10.1016/j.bcp.2021.114432. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80. Shen W., Liang X.H., Sun H., Crooke S.T. 2′-Фтор-модифицированный фосфоротиоатный олигонуклеотид может вызывать быструю деградацию P54nrb и PSF. Нуклеиновые Кислоты Res. 2015;43:4569–4578. doi: 10.1093/nar/gkv298. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Кирк Б., Джаяпракаш Н., Майя Дж., Ессейния А.-Р., Хайян П., Кристофер Т., Елена С.-Р., Кристофер Б., Дональд Ф., Джеффри К. и др. Расширение возможностей РНК-интерференции за счет липофильных конъюгатов миРНК нового поколения. Портфолио природы. 2021 г.: 10.21203/rs.3.rs-946835/v1. [CrossRef] [Google Scholar]
82. О’Шея Дж., Тэйл С.С., Дас Р., Бабу И.Р., Чарисс К., Манохаран М., Майер М.А., Златев И. Эффективный метод снижения для 5 ‘-[O, O-BIS (Pivaloyloxylyl)]-(E) -винил. Тетраэдр. 2018; 74: 6182–6186. doi: 10.1016/j.tet.2018.09.008. [CrossRef] [Google Scholar]
83. Godinho B.M.D.C.